一代的光學法，全程測量的方式，可應(yīng)用與清醒自由活動狀態(tài)下的小動物脈搏血氧測量。廣泛應(yīng)用于用于心血管研究，糖尿病，高血壓，腎臟疾病等領(lǐng)域的研究。

血氧飽和度（SpO2）是血液中被氧結(jié)合的氧合血紅蛋白的容量占全部可結(jié)合的血紅蛋白容量的百分比，也就是血液中血氧的濃度，它是呼吸循環(huán)的重要生理參數(shù)。血氧飽和度能夠反映出動物呼吸系統(tǒng)以及心血管的健康程度，在臨床動物疾病預(yù)防與診斷中起著重要的作用，同時也在研究心臟，肺，血液和血管疾病或者藥物測試中有廣泛的應(yīng)用。

MouseOx® Plus脈搏僅需一個探頭便可監(jiān)測多種參數(shù)，具有多種型號傳感器適用于新生鼠至成年大鼠，并且擁有核磁兼容型傳感器，提供核磁成像期間小動物的生理指標監(jiān)測對于清醒狀態(tài)下大小鼠生理參數(shù)測量，配備有專業(yè)清醒活動籠子，旋轉(zhuǎn)支架和杠桿臂、低扭矩滑環(huán)，低應(yīng)力環(huán)境，軟件有專門的清醒模式，其包括增強的過濾器和控制算法，允許儀器能夠更為準確監(jiān)測清醒活動狀態(tài)下小動物的心率、飽和度（Sp02）、呼吸頻率、呼吸幅度和脈搏幅度，并提供受試者活動測量，有利于提供更準確的數(shù)據(jù)，同時可選配多通道數(shù)據(jù)采集器，可進行多達8-16個動物同時監(jiān)測，配備專業(yè)軟件，可在軟件上顯示小動物的所有生理參數(shù)，還可選配為帶有體溫信號監(jiān)測接口的8通道數(shù)據(jù)采集器，配合軟件體溫模塊，允許研究人員連接溫度傳感器監(jiān)測小動物的體溫。

軟件具有標準模式與高級模式，可設(shè)置參數(shù)上下限報于監(jiān)測動物的異常生理參數(shù)，其中高級模式能夠在監(jiān)測監(jiān)測頁面實時觀察生理參數(shù)數(shù)據(jù)波形。軟件支持數(shù)據(jù)實時監(jiān)測與數(shù)據(jù)回演與導(dǎo)出，可長時間對動物進行觀察監(jiān)測。

所有測量都是通過一個的感應(yīng)器完成，準確、方便、高效。

型號：MouseOx   品牌：Starr    正在對麻醉狀態(tài)下的小鼠進行測試

優(yōu)勢特點：

傳統(tǒng)的血氧飽和度檢測方法是先采血，再利用進行電化學分析測出血氧分壓PO2然后計算出血氧濃度，此種方法比較麻煩，需要專業(yè)人士進行操作，且不能進行連續(xù)檢測。而血氧采用PPG技術(shù)，專門主要對Hb和HbO2的濃度變化進行檢測，時間響應(yīng)快，可做到動態(tài)實時監(jiān)測，裝置更小，整個系統(tǒng)便于移動和臨床監(jiān)測，且兩者具有很好的線性關(guān)系。

MouseOx® Plus脈搏是一代的光學法，全程測量的方式，和傳統(tǒng)有創(chuàng)的測量方式相比，準確性高，重復(fù)性和穩(wěn)定性好，僅需一個探頭便可監(jiān)測包含脈搏血氧在內(nèi)的多種參數(shù)，能夠?qū)φＩ砘顒訝顟B(tài)下的清醒動物進行監(jiān)測。

• 適用于小鼠、新生大鼠、大鼠的血氧測量，監(jiān)測心率范圍90 ~ 900 BPM
• 可測量多達7個生理參數(shù)：脈搏血氧、心率、脈搏頻率、脈搏幅度、呼吸頻率、呼吸幅度、體溫。
• 傳感器位置根據(jù)實驗的應(yīng)用和需要，可選擇足部、大腿、頸部和喉嚨等傳感器
• 采用光電傳感技術(shù)測量原理，適用于麻醉、清醒以及MRI環(huán)境的動物血壓測量
• 高通量設(shè)計，一次可監(jiān)控多達16個動物
• 輸出原始脈沖波形，可輸入到其他數(shù)據(jù)采集系統(tǒng)中進行數(shù)據(jù)分析
• 參數(shù)報警功能。在監(jiān)測生命體征的同時設(shè)置警報，以確保受試者的安全
• 具有有兩種通信方式，可通過U盤導(dǎo)出數(shù)據(jù)，也可連接電腦進行實時控制及數(shù)據(jù)傳輸
• 可連續(xù)監(jiān)測、重復(fù)檢測，準確性高，重復(fù)性和穩(wěn)定性好

應(yīng)用領(lǐng)域：

MouseOx® Plus脈搏在研究心臟，肺，血液和血管疾病或者藥物測試中有廣泛的應(yīng)用。目前已廣泛應(yīng)用于以下方面：
動物手術(shù)過程中生命體征的監(jiān)護：確保適當?shù)穆樽砩疃取㈩A(yù)防手術(shù)中缺氧、邊觀察邊控制呼吸量、邊觀察邊調(diào)整氧氣量 

轉(zhuǎn)化醫(yī)學研究：流感，肺炎，呼吸道合胞病毒和其它急性呼吸道疾病；肺損傷、肺癌、COPD、睡眠呼吸暫停及其他慢性呼吸道疾病；休克動物模型；中風和腦損傷；高血壓、低血壓和其他心血管疾病；缺氧&吸入研究；手術(shù)期間、麻醉狀態(tài)、活體成像過程中生命體征監(jiān)測；藥理學和毒理學研究

有多種探頭可供選擇：

· 根據(jù)實驗需求：可選擇大鼠型探頭、小鼠型探頭；

· 根據(jù)動物狀態(tài)：可選擇清醒活動狀態(tài)連續(xù)測量和麻醉（或手術(shù)）狀態(tài)測量探頭；

· 根據(jù)動物數(shù)量：有多通道適配器可供選擇，同時檢測多只動物的生命體征；

· 根據(jù)使用環(huán)境：可選擇核磁環(huán)境適用的無磁探頭；

  

主要功能：

· 小動物手術(shù)術(shù)中監(jiān)測(保證適當?shù)穆樽砩疃龋乐故中g(shù)中缺氧)

· 一個傳感器獲得多個生命信號 (動脈血氧飽和度，心率，呼吸頻率，脈搏幅度，呼吸幅度)

· 心肺功能參數(shù)記錄

· 輸出模擬數(shù)據(jù)

型號規(guī)格：

麻醉配置
MouseOxPlus主機與配套線纜
大腿傳感器
足部傳感器
溫度傳感器（選配）
高級軟件（帶密鑰）

清醒配置
MouseOxPlus主機與配套線纜
轉(zhuǎn)向器與平衡臂固定支架
小鼠頸部傳感器
大鼠頸部傳感器
溫度傳感器（選配）
國產(chǎn)清醒活動籠
高級軟件（含產(chǎn)品密鑰）

進口清醒活動籠（可根據(jù)需求選配）
小鼠進口清醒活動籠
大鼠進口清醒活動籠

（另有多通道配置，更多適用與足、腿或喉部等不同規(guī)格型號傳感器，MRI兼容型傳感器，詳情可咨詢玉研儀器！）

。     

      

         

經(jīng)過驗證的準確度:

使用有創(chuàng)血氣采樣測量結(jié)果與 MouseOx 測量結(jié)果的比較， 對比表明， 兩者具有很好的線性關(guān)系。

脈搏、血氧、呼吸等心肺監(jiān)測參數(shù):

· 脈波頻率在90到900BPM范圍內(nèi)監(jiān)測 (每分鐘心跳, Beat per minutes, BPM)

· 血氧飽和度監(jiān)測范圍：0% 到99% 動脈血氧飽和度；

· 血氧飽和度監(jiān)測誤差：<1.5% 橫跨整個監(jiān)測范圍；

· 血氧飽和度監(jiān)測反應(yīng)時間：實時報告動脈血氧飽和度, 在每次心跳以后0.72秒屏幕刷新；

· 呼吸頻率監(jiān)測范圍：每分鐘 25到450 次；

· 監(jiān)測反應(yīng)時間：呼吸率每1.7秒向用戶報告, 移動報告的值是10次呼吸的的平均數(shù)；

· 傷監(jiān)測脈搏充盈度以估量血流量的變化；

· 脈搏監(jiān)測范圍：內(nèi)徑0到800微米的徽小血管；

· 監(jiān)測誤差：< 2.4%橫跨整個監(jiān)測范圍；

· 監(jiān)測反應(yīng)時間：脈搏充盈度實時向用戶報告, 在每次心跳以后,0.72秒屏幕刷新，刷新屏幕顯示被測量的所有脈搏充盈度；

· 傷監(jiān)測動物呼吸幅度的變化；

· 呼吸幅度監(jiān)測范圍：每分鐘25到450次；

· 呼吸幅度監(jiān)測反應(yīng)時間：呼吸率每1.7秒向用戶報告, 移動報告的值是10次呼吸的的平均數(shù)；

血氧呼吸數(shù)據(jù)采集器：

8通道數(shù)據(jù)采集器

· 可對1-8只老鼠進行脈搏、血氧、呼吸的數(shù)據(jù)測量

模擬信號輸出模塊：

搭配模擬信號輸出模塊實時輸出模擬心博：

多鐘測試探頭可選：

根據(jù)需要，可選擇老鼠清醒狀態(tài)下使用的頸部探頭，麻醉狀態(tài)下使用的足部探頭和大腿探頭

小鼠腿部

  

小鼠頸部

  

大鼠足部

  

新生鼠

磁共振適用模塊及探頭

設(shè)備正在對清醒活動狀態(tài)的大鼠進行長時間、持續(xù)的數(shù)據(jù)采集

測量軟件：

實時顯示監(jiān)測數(shù)據(jù)，具有診斷模式，具備報價功能，數(shù)據(jù)可儲存為Text貨Windaq格式

玉研儀器是美國STARR公司的中國代理，美國Starr公司的Mouseox是專門應(yīng)用于小鼠和大鼠的監(jiān)護儀，可以測量脈搏血氧，呼吸，心率，脈搏幅度，呼吸幅度，體溫等參數(shù)。詳情請!

參考文獻：

1.Suzuki R, Yamasoba D, Kimura I, et al. Attenuated fusogenicity and pathogenicity of SARS-CoV-2 Omicron variant[J]. Nature, 2022, 603(7902): 700-705.
2.Wang G, Wen B, Deng Z, et al. Endothelial progenitor cells stimulate neonatal lung angiogenesis through FOXF1-mediated activation of BMP9/ACVRL1 signaling[J]. Nature communications, 2022, 13(1): 1-16.
3.Aiba I, Noebels J L. Kcnq2/Kv7. 2 controls the threshold and bi-hemispheric symmetry of cortical spreading depolarization[J]. Brain, 2021, 144(9): 2863-2878.
4.Bachus H, Kaur K, Papillion A M, et al. Impaired tumor-necrosis-factor-α-driven dendritic cell activation limits lipopolysaccharide-induced protection from allergic inflammation in infants[J]. Immunity, 2019, 50(1): 225-240. e4.
5.Han W, Tellez L A, Perkins M H, et al. A neural circuit for gut-induced reward[J]. Cell, 2018, 175(3): 665-678. e23.
6.Lai A Y, Dorr A, Thomason L A M, et al. Venular degeneration leads to vascular dysfunction in a transgenic model of Alzheimer’s disease[J]. Brain, 2015, 138(4): 1046-1058.
7.Thomas G M, Carbo C, Curtis B R, et al. Extracellular DNA traps are associated with the pathogenesis of TRALI in humans and mice[J]. Blood, The Journal of the American Society of Hematology, 2012, 119(26): 6335-6343.
8.Dorr A, Sahota B, Chinta L V, et al. Amyloid-β-dependent compromise of microvascular structure and function in a model of Alzheimer’s disease[J]. Brain, 2012, 135(10): 3039-3050.
9.Abt M C, Osborne L C, Monticelli L A, et al. Commensal bacteria calibrate the activation threshold of innate antiviral immunity[J]. Immunity, 2012, 37(1): 158-170.
Fung Y L, Kim M, Tabuchi A, et al. Recipient T lymphocytes modulate the severity of antibody-mediated transfusion-related acute lung injury[J]. Blood, The Journal of the American Society of Hematology, 2010, 116(16): 3073-3079.

    

    

    ：，

         

    ：3170965962

    yuyanbio

    ：yuyanbio